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COVID-19 Human IgM IgG ELISAキット(Spike Protein)(S1)

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※写真はイメージです

​96T　￥150,000

​（税別）

​※ 正規代理店ページへ移動します

マニュアル

​SDS

​フライヤー

製品の主な仕様

測定方法:　　　間接 ELISA 法

測定波長:　　　450 nm

測定試料:　　　血清

交差性:　　　　Human

保管温度:　　　2-8℃保管

品質保証期限:   本品の有効期限は製造後 12 カ月です。

プレートへの固相化抗原:　SARS-CoV-2 スパイクタンパク（S1ドメイン, 大腸菌発現系）

​キット内容

1. SARS-CoV-2 スパイクタンパク (S1ドメイン)固相化プレート

2. HRP 標識抗ヒト IgM 抗体

3. HRP 標識抗ヒト IgG 抗体

4. 洗浄液(10× PBST)

5. ウシ血清アルブミン（Diluent用）

6. Diluent 用バッファー (10×)

7. R-1:発色基質(TMB)

8. R-2:反応停止液(1 mol/L 塩酸)

×2

20 μL×1

20 μL×1

100 mL×1

×1

50 mL×1

10 mL×2

10 mL×2

​測定原理

  1. 固相化プレート上の リコンビナント SARS-CoV-2 スパイクタンパク (S1ドメイン) と、これを認識する試料中の抗体(以後、抗スパイクタンパク抗体と略称)を反応させる。

  2.  反応後、試料を洗浄操作により除去する。

  3.  固相化プレート上の 抗S1スパイクタンパク抗体と、HRP (Horseradish peroxidase) 標識抗ヒト IgM / IgG 抗体を反応させる。

  4. 余剰の HRP 標識抗ヒト IgM / IgG 抗体を洗浄操作により除去する。発色基質を加えて反応後に発色を止め、450nmの吸光度を測定する。

Spike Protain原理図.png

​測定の意義

　本キットは、新型コロナウイルス (SARS-CoV-2)のスパイクタンパク (S1ドメイン)を認識する、血清中ヒトIgM抗体とヒトIgG抗体を検出するための間接ELISAキットです。
   一般的には、IgM抗体は感染初期に生成され、症状の緩和とともに消失するとされています。IgG抗体はIgM抗体に遅れて産生が始まり、数カ月にわたって血中に残存するとされています。これにより次に感染した際の症状が軽くなったり、発症を防いだりすることが知られています。スパイクタンパクに対するIgM抗体、IgG抗体は感染以外でもmRNAタイプのワクチンで接種でも産生されるため、ワクチン接種後の評価に有用です。

本キット使用文献

  • M. S. Ashenagar, A. Matsumoto, H. Sakai, M. Tokiya, and M. Hara, ‘Comparison of CLEIA and ELISA for SARS-CoV-2 Virus Antibodies after First and Second Dose Vaccinations with the BNT162b2 mRNA Vaccine’ , Vaccines (Basel), pp. 1–10, 2022.

  • Y. Funakoshi et al., ‘Safety and immunogenicity of the COVID-19 vaccine BNT162b2 in patients undergoing chemotherapy for solid cancer’ , Journal of Infection and Chemotherapy, vol. 28, no. 4, pp. 516–520, 2022.

  • Y. Funakoshi et al., ‘Promising efficacy of following a third dose of mRNA SARS-CoV-2 vaccination in patients treated with anti-CD20 antibody who failed 2-dose vaccination’ , Vaccines (Basel), vol. 10, no. 6, p. 2022.04.28.22274174, 2022, [Online].

  • M. Watanabe et al., ‘A Third Dose COVID-19 Vaccination in Allogeneic Hematopoietic Stem Cell Transplantation Patients’ , Vaccines (Basel), vol. 10, no. 11, p. 1830, 2022.

  • M. Watanabe et al., ‘The safety and immunogenicity of the BNT162b2 mRNA COVID-19 vaccine in Japanese patients after allogeneic stem cell transplantation’ , Vaccines (Basel), vol. 10, no.2, p. 158, 2022.

  • N. Kaku et al., ‘Evaluation of anti-SARS-CoV-2 antibody testing in asymptomatic or mild COVID-19 patients in outbreak on a cruise ship’ , medRxiv, pp. 2003–2021, 2021.

  • Y. Funakoshi et al., ‘Limited increase in antibody titers following mRNA SARS-CoV-2 vaccination for more than 3 years after final dose of anti-CD20 antibody’ , Int J Hematol, pp. 1–4, 2022.

  • T. Yamashita et al., ‘Preexisting humoral immunity cross-reacting with SARS-CoV-2 might prevent death due to COVID-19 in critical patients’ , J Clin Med, vol. 11, no. 13, p. 3870, 2022.

参考文献

1.)平松　啓一, 標準微生物学, 第 11 版, 医学書院 (2012)

2.)Anu Haveri , “Serological and molecular findings during SARS-CoV-2 infection: the first case study in Finland,” January to February 2020 , Eurosurveillance.  Volume 25, Issue 11, 19, Mar 2020.

3.)Wanbing Liu, “Evaluation of Nucleocapsid and Spike Protein-based ELISAs for detecting antibodies against SARS-CoV-2”, J Clin Microbiol. 2020 Mar 30.

4.)Li Guo, “Profiling Early Humoral Response to Diagnose Novel Coronavirus Disease (COVID-19)”, Clin Infect Dis. 2020 Mar 21.

5.)Juanjuan Zhao, “Antibody responses to SARS-CoV-2 in patients of novel coronavirus disease 2019”, Clin Infect Dis. 2020 Mar 21.

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